降解的RNA可以用于qPCR实验吗？
☆在完整的RNA和降解的RNA样本中，检测的基因的Ct值是稳定的吗？
☆如果基因表达差异倍数不大，与RNA降解有关吗？
☆内参基因的作用：降低RNA降解对qPCR的影响
☆引物的选择：扩增合适大小的目的片段
基因定量包含逆转录和定量PCR，获得高纯度、降解程度低的RNA，对于其后的反转、定量结果，自然是非常重要的。
一、RNA完整性（RNA integrity）
RNA的降解程度可根据RIN值来评定，该值由Aligent 2100仪器测定。将RNA完整性分为10级，用数字1、2、3……8、9、10表示。RIN值越接近10，RNA完整性越好；RIN值越接近1，RNA降解越严重。
就降解程度而言，来源于组织的RNA较细胞严重。RNA完整性与样本的组成（内源性RNase含量）、保存、处理过程（处理难易程度）、处理时间（处理速度）有关。较坚硬、较难处理的样本（如瘤胃、空肠），获得的RNA的RIN值越小，且不同样本间重复性差。
二、RNA发生降解后，qPCR定量的Ct值变大
Corpus luteum来源的RNA经酶消化处理或紫外线照射，获得不同降解程度的RNA。之后，对18S rRNA、28S rRNA、β-actin及IL-1β定量。
我们可以看到：
1、不论是高丰度表达基因（18S rRNA、28S rRNA、β-actin）或低丰度表达基因（IL-1β），RNA降解程度越高，Ct值越大；RNA完整性越好，Ct值越小。
2、RNA质量越好，Ct值波动越小，qPCR实验的重复性也越好。
三、RNA发生降解后，定量结果不可控
进行基因表达量分析时，可通过选择内参基因尝试消除样本间模板量的差异。RNA的降解可认为是RNA“稳态”的变化，引入内参基因校正样本不同降解程度的差异。那么经内参（β-actin）校正后的基因（18S rRNA、28S rRNA、IL-1β）的qPCR检测结果即△Ct值变化情况如何呢？
可以看出：1、内参基因（β-actin）校正后，RNA降解前后，△Ct值变化较Ct值变化小。
2、经内参基因校正后，对于一些基因（28S rRNA），RNA降解前后，△Ct值依旧会出现“小的”变化。
因此，RNA模板发生降解，利用相对定量PCR可以定量基因表达的趋势，而进行精确定量需谨慎！因此，基因表达差异倍数不大时，需评估RNA质量。
四、从RNA完整性角度解释：qPCR定量，扩增产物长度最好控制在70-250bp
RNA降解程度与qPCR扩增基因的长度呈现一定的关系：70-250bp，RNA完整性越高，Ct值越小，呈现线性关系。而＞400bp，RNA完整性与Ct值之间无明显相关性。因此，RNA模板发生部分降解，对于＞400bp以上的目的基因，无法利用相对定量进行定性分析。
RNA发生降解，会影响qPCR的Ct值，导致定量数据的重复性差。即使使用内参基因校正，依旧会造成定量结果出现误差，不能精确反应样本间的基因表达量的差异。但是当降解不严重时，还是可以用于基因的定性分析。
小编码了这么多字，其实就是想说“作为模板的RNA，它的完整性对于做好qPCR实验很有意义”，毕竟RNA是容易降解的。
参考文献
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